體內巨噬細胞清除實驗的核心是特異性去除巨噬細胞群體,同時最da程度減少對其他免疫細胞和組織的影響,氯膦酸二鈉脂質體(Clodronate Liposomes)清除法是目前特異性最高、應用zui廣泛的體內巨噬細胞清除方法,幾乎不影響中性粒細胞、淋巴細胞等其他細胞。
一、核心原理
氯膦酸二鈉本身難以穿透細胞膜,被包裹進脂質體后,可通過巨噬細胞的吞噬作用被攝入胞內;脂質體在巨噬細胞溶酶體中被降解,釋放出氯膦酸二鈉,抑制細胞內 ATP 合成,最終誘導巨噬細胞凋亡。未被巨噬細胞吞噬的脂質體則會被肝脾代謝,對機體無明顯毒性。
二、操作流程
步驟 | 具體操作 | 關鍵參數 |
試劑準備 | 選擇商品化氯膦酸二鈉脂質體(推薦規格:5 mg/mL 氯膦酸二鈉),或實驗室自制(需驗證包封率>80%);同時準備空白脂質體作為對照 | 商品化試劑穩定性更高,避免自制脂質體包封率低導致的清除效率不足 |
動物與給藥途徑 | 適配小鼠、大鼠等常用實驗動物;根據靶向部位選擇給藥方式:①全身巨噬細胞清除:尾靜脈注射;②腹腔巨噬細胞清除:腹腔注射;③肺部巨噬細胞清除:氣管內滴注;④腸道巨噬細胞清除:尾靜脈/腹腔注射(結合腸道組織取材驗證) | 靜脈注射起效最快(24 h 可見顯著清除),局部注射靶向性更強 |
給藥劑量與時間 | 常規劑量:- 小鼠:100–200 μL/只(含 0.2–0.4 mg 氯膦酸二鈉),單次注射可維持 3–7 天清除效果;- 大鼠:按體重比例放大(5–10 mL/kg)實驗周期>7 天:可間隔 5–7 天重復注射一次 | 劑量過高可能導致肝脾輕微損傷,需預實驗優化 |
清除效率驗證 | 注射后 24–48 h 取材檢測,方法包括:①流式細胞術:檢測組織單細胞懸液中巨噬細胞標志物(小鼠:CD11b?F4/80?;大鼠:CD11b?ED2?)的陽性率變化②免疫組化/免疫熒光:組織切片染色,觀察巨噬細胞數量變化③ 功能驗證:檢測巨噬細胞吞噬功能(如熒光微球吞噬實驗) | 清除效率需達到 70% 以上,方可認為模型構建成功 |
三、優勢與注意事項
1、優勢
特異性強、毒性低、高活性、高穩定性、使用便捷、支持多種給藥途徑(靜脈/腹腔/皮下/鼻內等)、清除效果可逆(停藥后 2–3 周巨噬細胞可恢復正常水平)。
貨號 | 品名 | 規格 |
abs90559 | 體內巨噬細胞清除劑 | 5mL |
abs90560 | 體內巨噬細胞清除劑空白脂質體對照 | 5mL |
2、注意事項
必須設置空白脂質體對照組,排除脂質體本身對實驗的影響;
避免反復高頻注射,否則可能引發輕微炎癥反應;
對破骨細胞等巨噬細胞譜系細胞也有清除作用,若實驗關注骨代謝需謹慎使用。
3、使用方法:
具體注射方案可根據自身實驗參考文獻確定和優化,此處提供一種可參考的腹腔注射操作。
① 注射前,將Clodronate Liposomes(abs90559)和PBS Liposomes(abs90560)從冰箱取出,并回溫到室溫,但注意溫度不能超過30°C。
② 將Clodronate Liposomes和PBS Liposomes都上下顛倒8-10次混勻。隨后將26 Gauge針頭裝到1 mL注射器上吸取脂質體。吸取Clodronate Liposomes和PBS Liposomes的注射器不能混用。
注意:Clodronate Liposomes和PBS Liposomes 用前一定要充分混勻,不然可能影響實驗效果。顛倒混勻時需要輕輕混勻,盡量避免起泡沫。
③ 用左手抓住小鼠并固定住小鼠頭部和四肢。隨后將小鼠微微傾斜,讓頭朝向地面,使得集中在腹部的器官向頭部移動,遠離注射位點。
④ 注射前將注射器顛倒6次,再次混勻脂質體。
注意:長時間靜置可能會使脂質體在注射器中沉淀,所以用前需要再次混勻。
⑤ 針頭30度斜插入小鼠腹部右下方,根據實驗分組分別注射Clodronate Liposomes(實驗組)和PBS Liposomes(對照組),每只小鼠注射200 μL脂質體。
四、文獻應用分享
靶向腫瘤相關巨噬細胞(TAM)的功能研究解決方案
推薦模型:小鼠MC38(C57BL/6背景)或CT26(BALB/c背景)結直腸癌細胞系皮下或腹腔種植模型。
基因工程模型:采用髓系細胞特異性敲除小鼠(如Ccl7 MKO小鼠),用于研究特定基因在巨噬細胞中的功能。
2. 核心干預手段:巨噬細胞清除與靶向調控
氯膦酸鹽脂質體清除法
方案:在腫瘤接種前1天,腹腔注射氯膦酸鹽脂質體(200μL),之后每3天注射一次。
目的:直接驗證巨噬細胞整體在腫瘤生長和免疫治療應答中的必要性。
特異性靶點干預:
CCL7中和抗體:腹腔注射,100μg/次,每3天一次,用于阻斷CCL7功能。
小分子抑制劑(如Bindarit,abs810272):口服灌胃,5 mg/kg,每3天一次,用于抑制CCL7表達。
聯合治療:與抗PD-L1抗體(200μg,腹腔注射)聯用,評估協同抗腫瘤效果。
3. 多維度評價與驗證體系
驗證維度 | 核心檢測指標 | 推薦技術與產品 | 解決方案對應目的 |
模型有效性 | 腫瘤生長曲線、小鼠生存期 | 活體成像系統、游標卡尺 | 評估干預手段的抗腫瘤效果 |
免疫細胞浸潤分析 | TAM (F4/80+CD11b+)、CD8+ T細胞、M1/M2亞型 (iNOS/Arg1) | 流式細胞術(FCM)、免疫熒光/組化 | 量化免疫微環境重塑效果 |
功能性T細胞評估 | IFN-γ+ CD8+ T細胞、Granzyme B+ CD8+ T細胞 | 流式細胞術(胞內染色) | 評估細胞毒性免疫功能恢復情況 |
代謝與信號通路 | 脂質含量(Bodipy)、線粒體功能(OCR)、PEX3/PI3K/AKT/STAT1蛋白表達 | Seahorse代謝分析、Western Blot、免疫熒光 | 闡明CCL7調控TAM免疫抑制功能的分子機制 |
趨化因子網絡 | CCL7、CXCL10等因子在血清或細胞上清中的濃度 | ELISA試劑盒 | 驗證CCL7對T細胞招募的抑制作用 |
巨噬細胞清除驗證:使用氯膦酸鹽脂質體清除巨噬細胞后,wan全消除了外源性CCL7的促瘤作用,直接證明了CCL7的功能依賴于巨噬細胞的存在。
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靶向CCL7的效果:使用中和抗體或抑制劑(Bindarit)靶向CCL7,可抑制腫瘤生長,延長生存期;減少TAM浸潤,并促進其向M1樣表型(iNOS+)轉變;顯著增加腫瘤內具有殺傷功能的CD8+ T細胞(IFN-γ+)浸潤。
聯合治療優勢:抗CCL7與抗PD-L1聯合治療展現出顯著的協同效應,抗腫瘤效果和生存獲益均優于單一療法,為臨床轉化提供了強有力依據。
五、關鍵成功因素總結
脂質體質量:選擇商業化的穩定制劑(如Absin abs90559)
注射技術:確保準確進入目標腔室,避免滲漏
混合均勻:注射前充分混勻脂質體,防止沉淀
驗證步驟:必須通過組織學或流式確認清除效率
對照嚴謹:至少設置PBS和空脂質體雙重對照
時間把握:根據實驗周期設計合理的給藥頻率
參考文獻:
[1] Chen Y, Liu X, Chen J, et al. Macrophage CCL7 promotes resistance to immunotherapy for colorectal cancer by regulating the infiltration of macrophages and CD8+ T cells. J Immunother Cancer. 2025;13(11):e013027. Published 2025 Nov 24. doi:10.1136/jitc-2025-013027
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